就乾思生物科技列舉的五個必需：培養基、血清、無菌無毒環境、恒定生長溫度以及合適氣體的環境是非常重要的，必須要注意的地方。

前期需要做好準備工作，包括器皿的清洗、干燥與消毒，培養基與其他試劑的配制、分裝及滅菌，無菌室或超凈臺的清潔和消毒，培養箱及其他儀器的檢查與調試等。設施，器材就有超凈臺，倒置顯微鏡，離心機，壓力蒸汽消毒器等，以及各種的玻璃器材，塑料器材，橡皮器材和金屬器材。

具體步驟如下：

一、復蘇

1、把凍存管從液氮中取出來，立即投入37度水浴鍋中，輕微搖動。液體都融化后（大概1-1.5分鐘），拿出來噴點酒精放在超凈工作臺里。

2、把上述細胞懸液吸到裝10ml培養基的15ml的離心管中（用培養基把凍存管洗一遍，把粘在壁上的細胞都洗下來），1000轉離心5分鐘。

2.把上清液倒掉，加1ml培養基把細胞懸浮起來。吸到裝有10ml培養基的10cm培養皿中前后左右輕輕搖動，使培養皿中的細胞均勻分布。

4.標好細胞種類和日期、培養人名字等，放到CO2培養箱中培養，細胞貼壁后換培養基。

5.zui后3天換一次培養基。

二、傳代（傳代動物細胞）

1.培養皿中的細胞覆蓋率達到80%-90%時要傳代。

2.把原有培養基吸掉。

3.加適當的胰蛋白酶（能覆蓋細胞就行），消化1-2分鐘。

4.細胞都變圓后加如入等體積的含血清的培養基終止消化。

5.用移液槍吹打細胞，把細胞都懸浮起來。

6.把細胞吸到15ml的離心管中，1000轉離心5分鐘。

7.倒掉上清液，加1-2ml培養基，把細胞都吹起來。

8.根據細胞種類把細胞傳到幾個培養皿中。一般，癌細胞分5個，正常細胞傳3個。繼續培養。

三、凍存

1、把細胞消化下來并離心（同上）。

2、用配好的凍存液把細胞懸浮起來，分裝到滅菌的凍存管中，靜止幾分鐘。

3、寫明細胞種類，凍存日期。（4℃--30min，-20℃--30min，-80℃。）

（凍存液的配制：70%的*培養基+20%FBS+10%DMSO.DMSO要慢慢滴加，邊滴邊搖。）

需要注意的事項：

實驗材料要新鮮，從活體分離材料后要低溫保存，并盡快進行細胞分離實驗。無菌操作。操作時用的培養液，可加平時細胞培養液五倍含量的請鏈霉素。

用酶法分離細胞時，注意酶液的濃度和控制消化時間。貼塊法分離細胞時，注意動作要輕柔，不要傷到細胞組織，組織塊邊緣盡量平整有利于細胞游離。

培養液的選擇。不同的細胞有對培養液中營養的要求不同，根據所分離細胞的特性選擇。

目前，細胞培養的目的和用途主要科學研究及生物制藥，它的耗資少、經濟、成本低、可大量培養，利于生物制品的生產。所以希望未來，我們的生物科技越來越好，共同走向美好的明天！