IEC-6大鼠小腸上皮細胞系
IEC-6大鼠小腸上皮細胞系作為源自大鼠小腸隱窩的正常上皮細胞模型，因保留小腸上皮的增殖分化特性及物質吸收功能，在腸黏膜屏障穩態、營養吸收機制及腸道疾病病理研究中具有重要價值，成為探究小腸上皮生理功能及相關疾病的關鍵實驗工具。
細胞特性與來源背景：該細胞系源自大鼠小腸上段隱窩組織，經原代培養和純化獲得。細胞形態呈上皮樣，多為立方形或短柱狀，胞體大小均勻（直徑約 14-18μm），胞質豐富且呈嗜酸性，可見較多的線粒體和內質網，約 12% 細胞可見刷狀緣結構，細胞核呈圓形或橢圓形，位于細胞基底部，核仁清晰。生長方式為貼壁生長，呈單層鋪路石樣排列，具有明顯的接觸抑制現象，傳代后 24 小時貼壁率達 92%。核心參數表現出正常小腸上皮細胞特征：倍增時間約 62 小時，連續傳代 18 次后仍保持穩定的生物學特性；表面標志物表達du特，細胞角蛋白 18（CK18）陽性率達 95%，小腸上皮標志物絨毛蛋白（villin）陽性率 93%，上皮細胞黏附分子（EpCAM）陽性率 91%；具有正常的二倍體核型（染色體數 42 條），無染色體畸變；細胞間連接緊密，緊密連接蛋白 ZO-1、occludin 表達豐富，跨上皮電阻值達 350Ω?cm2；能主動吸收葡萄糖和氨基酸，葡萄糖轉運速率達 32nmol/(h?mg 蛋白)；可分泌腸三葉因子（TFF3），基礎分泌量達 38ng/mL；無微生物污染，細胞純度達 96%，保障實驗結果的可靠性。
科研應用價值：在腸黏膜修復研究中，IEC-6 細胞經表皮生長因子（EGF）處理 48 小時后，遷移速率增加 58%，增殖活性提升 45%，絨毛蛋白表達量增加 3.2 倍，可模擬小腸黏膜損傷后的修復過程，為解析腸上皮再生機制提供理想模型。
在營養吸收機制研究方面，該細胞經胰島素處理后，葡萄糖轉運蛋白 GLUT2 表達量增加 4.2 倍，葡萄糖吸收速率提升 60%，氨基酸轉運體 B?AT1 表達量增加 3.5 倍，可模擬胰島素對小腸營養吸收的調控過程，適用于探究營養物質吸收的分子機制。
腸道疾病研究領域，該細胞經脂多糖（LPS）處理后，炎癥因子 IL-6 分泌量增加 4.5 倍，腫瘤壞死因子 -α（TNF-α）表達量提升 3.8 倍，緊密連接蛋白 occludin 表達量下降 40%，能很好地模擬腸道感染引起的黏膜屏障破壞，為評估腸道抗炎藥物的療效提供實驗基礎。此外，該細胞與腸道菌群共培養時，乳酸桿菌可使細胞的緊密連接蛋白表達量增加 30%，炎癥因子分泌量減少 25%，可用于探究腸道菌群與腸上皮的相互作用機制。
培養與保存規范：推薦使用含 10% 胎牛血清的 DMEM 培養基，添加 0.1U/mL 胰島素、2mM 谷an酰胺及 1% 抗生素混合液，培養環境為 37℃、5% CO?飽和濕度培養箱。培養基需每 2-3 天更換一次，以維持細胞的正常功能。傳代時，用 PBS 沖洗細胞 2 次，加入 0.25% 胰dan白酶 - EDTA 混合液，37℃孵育 8-10 分鐘，待細胞間隙增大后輕輕吹打使細胞脫落，傳代比例為 1:3-1:4，每 5-6 天傳代一次，避免過度傳代導致分化能力下降。
凍存液采用培養基 + 10% DMSO+20% 胎牛血清的混合液，細胞濃度調整為 3×10?個 /ml，經程序降溫（-20℃1 小時→-80℃過夜→液氮保存）后，復蘇存活率達 85% 以上，2-3 代內可恢復正常的生長和吸收功能。運輸采用干冰冷凍運輸或培養瓶活細胞運輸，收到細胞后需靜置培養 24 小時，更換培養基后觀察細胞形態，確認無異常漂浮物且排列整齊后進行實驗。該細胞系僅限科研使用，操作時需避免頻繁更換培養條件，以防影響其吸收功能。
IEC-6 大鼠小腸上皮細胞系以其穩定的小腸上皮特性、完整的吸收功能及典型的黏膜屏障構建能力，在腸道生物學研究與腸道疾病機制探索中發揮著重要作用，為揭示腸道疾病的發病機制和開發新型治療藥物提供了可靠的細胞模型。
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