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TECHNICAL ARTICLES詳細介紹
來源與構建:該細胞系以 CHO-S 為親本,通過慢病毒載體介導將 E2-Fc 融合基因導入細胞基因組,經 Zeocin 抗性篩選及單克隆純化獲得穩定株。融合基因由 EF1α 啟動子驅動表達,E2 片段源自病毒包膜蛋白(如丙型肝炎病毒或冠狀病毒),C 端連接人 IgG1 的 Fc 段,名稱中 “E2-Fc" 直接標識其表達的核心功能蛋白 —— 兼具 E2 免疫原性與 Fc 段穩定性的融合分子。構建過程中引入信號肽優化序列,確保蛋白高效分泌至培養基(分泌效率達 90% 以上)。
形態與增殖:體外培養呈上皮樣形態,貼壁生長時呈多角形,排列緊密;懸浮培養可形成直徑 20-50μm 的松散聚集體,細胞輪廓清晰,活力長期維持在 92% 以上。37℃、5% CO?條件下,增殖周期約 30-36 小時,適應含 10% 胎牛血清的 DMEM/F12 培養基與多種無血清化學限定培養基,傳代 80 次以上仍保持穩定生長速率,E2-Fc 表達量波動<8%,凍存復蘇后存活率超 89%。
功能特征:該細胞系的核心優勢在于 E2-Fc 融合蛋白的雙重功能特性:E2 部分保留天然病毒抗原表位(ELISA 檢測與特異性抗體結合率>95%),可誘導特異性免疫應答;Fc 段賦予蛋白更長半衰期(體外穩定性達 14 天以上),同時便于通過 Protein A 親和層析快速純化(純度一步可達 95% 以上)。流式細胞術檢測顯示,細胞表面無 E2-Fc 滯留,98% 以上的表達蛋白分泌至培養基,避免了胞內積累導致的細胞毒性。
病毒疫苗研發
免疫機制研究
抗病du藥物篩選
貼壁培養操作:
復蘇:從液氮取出凍存管,37℃水浴 1-2 分鐘解凍,轉移至含 10mL 預熱培養基(DMEM/F12+10% 胎牛血清 + 50μg/mL Zeocin)的離心管,1000rpm 離心 5 分鐘,重懸后接種至 T75 培養瓶,37℃、5% CO?培養箱靜置培養。
換液:接種 24 小時后首ci換液,去除未貼壁細胞,此后每 48 小時換液一次,收集上清可用于蛋白初步檢測(ELISA 法檢測濃度約 5-8μg/mL)。
傳代:當細胞融合度達 80%-90% 時,棄培養基,PBS 清洗 2 次,加入 2mL 細胞解離液,37℃孵育 3 分鐘,鏡檢細胞脫落后加入 8mL 培養基終止解離,按 1:4 比例傳代至新培養瓶。
懸浮培養與蛋白純化:
凍存流程:取對數生長期細胞,1000rpm 離心 5 分鐘,用凍存液(80% 無血清培養基 + 10% 胎牛血清 + 10% DMSO)重懸至 6×10?個 /mL,分裝至凍存管,程序降溫盒 - 80℃過夜,次日轉移至液氮保存,保存期可達 5 年以上,復蘇后需在含 Zeocin 的培養基中培養 2-3 代以穩定表達。
優勢:E2-Fc 蛋白表達穩定,批間活性差異<7%;Fc 段便于快速純化,純化步驟較 His 標簽蛋白減少 2 步;融合蛋白半衰期長(體外 4℃保存 14 天活性保留 90%);與原代細胞相比,可無限傳代且實驗重復性高(變異系數<6%)。
局限性:Fc 段可能干擾部分抗原表位的免疫識別,需結合無 Fc 標簽的 E2 蛋白驗證;高表達時(>10μg/mL)可能抑制細胞增殖,需定期更換培養基;培養成本高于普通 CHO 細胞(因無血清培養基價格較高)。
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